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    瓊脂糖凝膠電泳實驗技巧及異常分析

    跑電泳是分子生物學(xué)實驗中的基本技術(shù),無論是進行何種分子生物學(xué)實驗,可能在某一個階段需要進行電泳實驗。瓊脂糖作為電泳的常用材料,被廣泛用于DNA的切膠回收、DNA分離和驗證DNA重組、質(zhì)粒是否切開等實驗。接下來,我們將探討瓊脂糖凝膠電泳實驗的小技巧和常見異常分析。

    首先,讓我們了解一下膠液的制備。稱取0.4g瓊脂糖,加入到200ml錐形瓶中,再加入50ml0.5×TBE稀釋緩沖液。隨后,將此瓶放入微波爐加熱,直至瓊脂糖全部融化,取出并搖勻,形成0.8%瓊脂糖凝膠液。值得注意的是,總液體量不宜超過錐形瓶容量的50%,以避免溢出,同時加熱過程中需不時搖動以使瓊脂糖顆粒均勻分布,并在加熱時蓋上封口膜以減少水分蒸發(fā)。

    接著,我們進行膠板的制備。在倒膠時,溫度不宜過低,以免凝固不均勻,影響電泳效果。同樣,倒膠速度也要適中,以防止產(chǎn)生氣泡。待膠完全凝固后,使用梳子撥出,注意不要損傷梳底部的凝膠。

    然后,進行加樣操作。上樣時要小心謹慎,避免損壞凝膠或?qū)悠凡鄣撞磕z刺穿,確保電泳實驗的準確性。

    電泳過程需按照特定電壓和電流進行。加完樣后,合上電泳槽蓋,立即接通電源,并控制電壓保持在60-80V,電流在40mA以上。當(dāng)溴酚藍條帶移動至距凝膠前沿約2cm時,應(yīng)停止電泳。

    電泳完畢后,移入0.5μg/ml的EB溶液中進行染色,室溫下染色20-25分鐘。在波長為254nm的紫外燈下觀察染色后的或已加有EB的電泳膠板,DNA的存在處將顯示出肉眼可見的桔紅色熒光條帶。在紫光燈下觀察時應(yīng)戴上防護眼鏡或有機玻璃面罩,以避免損傷眼睛。

    在實驗過程中,還需注意以下幾點細節(jié):酶切時所加DNA溶液體積不宜過大,以避免DNA溶液中的其他成分干擾酶反應(yīng);酶活力的使用量需根據(jù)實驗需求適當(dāng)調(diào)整,過量使用酶不經(jīng)濟,且微量雜質(zhì)可能干擾后續(xù)反應(yīng);市場銷售的酶通常濃度較高,使用前應(yīng)進行適當(dāng)稀釋;酶保存時,應(yīng)控制反應(yīng)液中甘油濃度在10%以下,以防止對酶活性產(chǎn)生影響;觀察DNA時需避免長時間暴露在紫外光下,使用長波長紫外燈(300-360nm)以減少對DNA的切割作用;EB作為強誘變劑,具有中等毒性,配制和使用時需佩戴手套,并妥善處理灑出的EB。

    在電泳實驗中,可能會遇到一些異常現(xiàn)象。例如,加樣孔有熒光的情況,可能與DNA滯留、蛋白質(zhì)殘留或特殊樣品雜質(zhì)有關(guān)。較大的DNA與蛋白質(zhì)結(jié)合后,電泳不能出孔而產(chǎn)生熒光。酶反應(yīng)產(chǎn)物若未進行純化去除酶,也可能在孔中出現(xiàn)熒光。對于植物樣品,可能存在由其他雜質(zhì)殘留引起的熒光。

    對于總RNA非變性電泳顯示28S不如18S亮的情況,可能表明28S未被EB飽和,或者基因組DNA的電泳也顯示出類似現(xiàn)象。解決方法可以簡單補染或調(diào)整上樣量和膠中EB的量,確保28S比18S更為明亮。

    電泳中出現(xiàn)的降解現(xiàn)象表現(xiàn)為條帶不再突出,向小片段方向彌散,亮度逐漸衰減。如果同時觀察到加樣孔異常亮、彌散發(fā)生在主條帶位置的上下兩個方向、從加樣孔即開始彌散等情況,需要進一步檢測。在徹底勻漿之前,核酸降解的主要原因是樣品保存不當(dāng)或操作不規(guī)范。確保樣品在保存和處理過程中的快速操作,以及選擇合適的裂解液,可以有效減少或避免核酸降解。

    為了減少或杜絕核酸降解,關(guān)鍵在于重點放在樣品被徹底勻漿之前。嚴格控制樣品的保存條件,縮短樣品從脫離原來的生存環(huán)境或低溫到被徹底勻漿之間的時間,以確保核酸質(zhì)量。必要時,可以嘗試優(yōu)化裂解過程或選擇更為溫和的處理方法。

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