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    影響免疫檢測的因素有哪些

    影響免疫檢測的因素有哪些

      影響免疫檢測的因素有很多,包括緩沖液、封閉、抗體、清洗、檢測底物等等。下面是我為大家?guī)淼挠绊懨庖邫z測的因素的知識,歡迎閱讀。

      緩沖液

      最常用的兩種緩沖液是磷酸鹽緩沖液(PBS)和Tris緩沖液(TBS)。調整配方中緩沖液組分的各種改良配方已見諸期刊。緩沖液的關鍵要求是它應有助于保持抗體的生物活性。因此,離子強度和pH值應相當接近生理狀態(tài)。PBS的配方(磷酸鹽總濃度10mM)適用于廣泛的抗體和檢測底物。

      在孵育過程中,裝有膜的容器應輕輕搖動。緩沖液的量應足夠,完全覆蓋膜,使其在緩沖液中自由漂浮。如果不止一張印跡放在容器中,緩沖液容量不足會導致印跡膜粘在一起。這將影響孵育溶液的充分接觸,導致各種假象,如背景高、信號弱和靈敏度不均勻等。

      封閉

      要獲得有意義的結果,必須保證抗體只與感興趣的蛋白質結合,而不與膜結合。利用惰性蛋白、非離子去污劑,或無蛋白的封閉劑來封閉膜上未被占據的位點,可減少抗體的非特異結合(NSB)。

      封閉劑與膜的親和力應高于抗體。它應填滿膜上未被占據的位點,但不會替換膜上的目標蛋白。最常用的封閉劑是牛血清白蛋白(BSA,0.2-5.0%)、脫脂牛奶、酪蛋白、明膠、吐溫20去污劑的稀釋液(0.05-0.1%)以及Bløk®試劑。封閉劑通常溶解在PBS或TBS中。

      與封閉相關的風險包括:選擇不適當的封閉劑或過量封閉會替換或掩蓋目標蛋白質。因此,封閉劑的正確選擇對成功的免疫檢測很關鍵。例如,奶粉不能用于生物素化或刀豆蛋白標記的抗體,因為牛奶中含有糖蛋白和生物素。在用磷酸化特異性抗體對磷酸化蛋白進行檢測分析時,如果采用粗蛋白制劑作為封閉劑,由于這些制劑中可能含有磷酸酶,而印跡上的磷酸化蛋白會被這些酶去磷酸化,就有可能會影響分析結果。研究表明,在封閉液中添加磷酸酶抑制劑可增強磷酸化特異性抗體的信號。此外,適用于一種抗原-抗體組合的封閉劑可能不適用于其他組合。

      封閉液被點樣在空白的PVDF膜上,而膜已在甲醇中浸潤,并在TBS中平衡。隨后在印跡上添加檢測試劑,孵育5分鐘,并曝光在X射線膠片上。暗斑的出現則表明封閉劑與檢測試劑不兼容。如果在標準的Western印跡操作中用Immobilon®-P轉印膜來替代Immobilon®-PSQ轉印膜,那么封閉液可能不足以飽和膜表面。可能需要更多的清洗步驟來降低背景。

      抗體

      在封閉之后,印跡與一個或多個抗體孵育。第一個抗體與目標蛋白結合,而第二個抗體與第一個結合。第二個抗體結合有酶或染料,可用來指示蛋白的位置。

      盡管一抗能直接標記,但使用二抗有明顯的優(yōu)勢。首先,不止一個二抗分子能夠與單個一抗分子結合,形成信號擴增。其次,標記的二抗(酶-抗體結合物)可用于大量不同特異性的一抗,從而不再需要標記多個一抗。

      多克隆或單克隆的`一抗都可使用。多克隆抗體通常是以抗血清或親和純化的抗體形式提供的。單克隆抗體是在腹水或組織培養(yǎng)液中表達的,可直接使用或進行親和純化。一定要記住,變性蛋白可能無法被天然抗原培育出的抗體所識別。在某些情況下,可能需要非變性凝膠來進行印跡。抗體以緩沖液和封閉液稀釋,以避免與膜的非特異結合。抗體稀釋液通常也包含痕量的吐溫20或另一種去污劑,以防止抗體的非特異聚集。許多發(fā)表的化學發(fā)光操作需要在封閉液和抗體稀釋液中添加0.1%(v/v)吐溫20。我們必須認識到,高于0.05%(v/v)的濃度有可能從膜上洗掉一些印跡的蛋白質。

      提高吐溫20去污劑的濃度通常會降低背景。一種更簡單且更經濟的策略是降低抗體的濃度,特別是二抗(詳見圖1)。抗體必須特異針對目的蛋白,不能與封閉液中的組分交叉反應,且應該是相對純凈的。其他蛋白質或聚集物形式的雜質會導致非特異性結合和背景增高。

      免疫檢測是一種極其靈敏的方法。為了實現高的信噪比和最高的靈敏度,一抗和二抗的濃度應針對每種情況來優(yōu)化。一般來說,高倍稀釋一抗或降低凝膠上的蛋白上樣量可減少非特異信號。高倍稀釋酶標記的二抗可最大限度降低整體的高背景。

      一抗和二抗的最佳濃度也取決于檢測試劑的靈敏度。高靈敏度的試劑(檢測到飛克級)與低靈敏度的試劑(檢測到皮克級)相比,抗體用量可減少20倍。抗體濃度的優(yōu)化取決于檢測底物的例子如圖13所示。在使用最靈敏的檢測試劑時,過量的抗體導致高的非特異性和整體背景增高(左上)。在這種情況下,將一抗稀釋度從1:1,000提高到1:10,000,改善了信噪比。在使用沒那么靈敏的檢測試劑(中間和最下面一行)時,抗體需要更為濃縮,以產生相同的信號。

      清洗

      清洗印跡,從膜上去除未結合的抗體,它們可能導致高背景和檢測不佳。通常使用吐溫20的PBS或TBS稀釋液(0.05% v/v),特別是當抗體制劑是粗制的,或高濃度使用時。如前所述,濃縮的去污劑溶液可能導致感興趣的蛋白質從膜上洗脫。對于高度純化的抗體,往往只使用緩沖液進行清洗。

      所需的清洗次數最好根據實驗來確定。清洗太少會產生過多的背景,而清洗過度有可能洗脫抗體并降低信號。建議至少清洗三次,每次5分鐘。

      在TBS清洗液中添加最多0.5M NaCl和0.2% SDS,并將清洗時間延長至2小時,可降低頑固的背景。

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    影響免疫比濁測定的因素不包括
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    影響對流免疫電泳的因素是什么?
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    免疫因素是什么意思?
    免疫因素能夠影響人體免疫功能的強弱,從而影響健康狀況。免疫功能低下容易導致感染病、自身免疫性疾病等疾病的發(fā)生。同時,免疫功能的正常和穩(wěn)定能有效對抗外部侵襲,維持身體的正常狀態(tài),從而保證身體健康。人們可以通過科學生活方式來提高免疫因素,比如更有規(guī)律地作息,充足的睡眠,均衡的飲食,適量的運動。

    免疫斑點試驗的影響因素
    濃度過高可出現假陽性,過低則降低試驗的敏感性。 2. 酶結合物濃度對試驗成功與否至關重要。最適濃度常與包被抗原濃度有關,應根據試驗具體條件作方陣滴定來確定。 3. 顯色時間,一般認為5-10分鐘較好。顯色時間過長常導致本底著色加深,降低試驗的特異性。 4. 用抗原包被NC檢測抗體時,待檢樣品加...

    生殖免疫全套檢查哪些項目
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